Practicas aulicas exitosas
Proyecto: Producción de Hongos Comestibles del Género Pleurotus ostreatus.
Registro pedagogico
Secuencia didactica
Figura 1: alumno con una carretilla de centeno picado
DESARROLLO
Figura 3: esterilización del sustrato
Tapar el recipiente y dejarlo hervir por 3 horas, escurra sin destapar completamente. Al enfriar, el material estará listo para sembrar.
3) Siembra del micelio del hongo (inoculación): la inoculación consiste en sembrar la semilla en el sustrato esterilizado para permitir el crecimiento y desarrollo del micelio; se realiza en el área de inoculación. Esta debe estar desinfectada completamente para iniciar el proceso. La persona que siembre debe tener toda la protección necesaria para llevar a cabo este proceso.
Figura 6: siembra de micelio en sustrato viruta y aserrín en bolsas de polietileno
Figura 7: bolsas de sustrato inoculadas con micelio de Pleurotus ostreatus.
4) Incubación
Figura 9: Aparición de los primeros
primordios de las setas
Figura 10: bolsas sembradas con hongos del genero Pleurotus ostreatus en la etapa de fructificación
Figura 11: cosecha de hongos comestibles
Figura 13: primordios y setas
Después de la primera cosecha, la producción de las bolsas entran en un periodo de reposo de (cinco 5 a 10 diez días) antes de la segunda cosecha, y así sucesivamente.
Figura 14: tamaños de las setas
Linea del tiempo de desarrollo del proyecto aulico
Microbiologia Industrial Agroalimentaria.
Presentación de los resultados del proyecto aulico.
Registro pedagogico
El
presente proyecto consiste en la producción a baja escala de hongos comestibles
conocidos como gírgolas (pleurotus ostreatus).
En
un principio se realizo esta experiencia en el laboratorio, para poner a
punto la técnica y posteriormente una vez terminada la misma se pretende
transmitirla a la comunidad, dado a que es un proceso sencillo, económico y
fácil de realizar.
Cuando
comencé a dictar esta asignatura el primer tema a desarrollar es microscopia,
este tema lo desarrollo en forma teórica-practica. En la práctica se realiza un
trabajo práctico de laboratorio de observación en el microscopio de hongos que
producen deterioro en los alimentos. Posteriormente se comienza a desarrollar
el tema de hongos en el aula.
La
MEP Julieta Martínez presenta el proyecto de cultivo de hongos comestibles
Pleurotus Ostreatus en la reunión
del área técnica de la escuela N°4-191 Daniel Hugo Pierini, luego se propuso el
proyecto a los alumnos y comenzamos a buscar información acerca del tema, se
organizo esa información, se presentaron clases expositivas y posteriormente se
realizo la siembra de los hongos comestibles, realizando las observaciones y
cuidado de esta etapa.
A
los alumnos se los ha evaluado constantemente durante todo el proceso mediante
entrega de informes, exposición oral de las clases acerca del tema, desempeño
en el laboratorio, adiestramiento en el uso y cuidado del microscopio y en la
siembra de Pleurotus ostreatus.
Con
este proyecto se pretende articular los contenidos teóricos-prácticos del tema
hongos desarrollados en la asignatura Microbiología Industrial Agroalimentaria
que se dicta en 5° año de la Escuela N° 4-191 Daniel Hugo Pierini del Paraje La
Junta.
En
este proyecto se han observado los siguientes factores positivos y negativos:
Factores
positivos:
Acompañamiento
del equipo directivo
MEP
capacitada en el cultivo de hongos para asesorar a los alumnos.
Predisposición
de los alumnos para llevar a cabo la siembra, cuidado y cultivo de hongos.
Entrega
de trabajos de los alumnos en tiempo y forma.
Factores
negativos
Falta
de espacio para llevar a cabo la actividad (falta de infraestructura para trabajar
en condiciones).
El
diseño del proyecto se realizo teniendo en cuenta las actividades que se
llevaron a cabo. Adjunto
la planilla de actividades con las fechas de realización de las mismas que
coincide con el libro de temas del curso.
Fecha
|
Actividad
|
17/05/2015
|
Clase teórica de microscopia y
hongos
|
19/05/2017
|
Presentación de la idea proyecto en
la reunión del área técnica por la MEP Julieta Martínez
|
20/05/2017
|
Practica de microscopia de hongos
patógenos
|
07/06/2017
|
Elaboración de informe de la
práctica de observación de hongos
|
10/06/2017
|
Búsqueda de información de hongos
comestibles de Pleurotus Osteatrus
|
21/06/2017
|
Presentación de clases especiales
acerca de Pleurotus Ostreatus.
|
08/07/2017
|
Siembra en el laboratorio de
Pleurotus Ostreatus
|
08/07/2017 – 14/08/2017
|
Control de la fase de incubación y
observación del crecimiento del micelio. Registro fotográfico. Elaboración de
informes, presentación de Power Point y video.
|
14/08/2017
Hasta la actualidad
|
Cosecha
Elaboración de escabeches y gírgolas
en vinagre
Uso en pizzas
|
Fuente: elaboración propia
Secuencia didactica
Espacio
curricular: Microbiología
Industrial Agroalimentaria
Tema:
Producción de hongos comestibles del género Pleurotus
ostreatus.
1) Motivación y recuperación de saberes previos.
Estrategia didáctica: A
partir de la siguiente imagen se plantea la situación problemática como
pregunta disparadora del tema.
Figura 1: alumno con una carretilla de centeno picado
Pregunta problema:
¿Saben
cómo podemos aprovechar los residuos lignocelulosicos que se generan como
subproductos de la actividad agrícola?
2) Dialogo abierto con
expresión libre de ideas.
3) Se presenta la imagen
de los hongos comestibles como propuesta a la pregunta problema.
Figura 2: hongos comestibles
DESARROLLO
Las
setas son un grupo especial de hongos que pertenecen al reino Fungí, crecen forma natural en troncos
descomposición o en diferente materiales obtenidos como subproductos de la
actividad agrícola. Por esta razón es posible cultivarla en desechos de las
actividades agrícolas, por ello nosotros vamos a cultivarlas en dos sustratos:
viruta-aserrín y centeno. El proceso para realizar el cultivo de los hongos es
relativamente simple y por tanto permite cultivarlos utilizando tecnologías no
sofisticadas como vamos a ver en este caso; con la que tienen la ventaja de
producir alimento para consumo humano a partir de desechos agrícolas, además de
ayudar al rápido reciclaje de tales desechos. Las setas del género Pleurotus ostreatus se pueden
comercializar frescas, deshidratadas, en conservas. Los residuos del cultivo de
las setas pueden ser utilizados como mejoradores del suelo así como complemento
en la alimentación del ganado.
Etapas
del proceso productivo
1) Adecuación del sustrato:
El
sustrato es el material sobre el cual crecerá el hongo; en general será algún
residuo poscosecha (rico en lignina y celulosa). Estos residuos se pueden
enriquecer con otros materiales o sustratos, lo cual mejora el contenido
nutricional del sustrato y favorece el crecimiento de las setas. Se utilizan
los siguientes materiales como sustrato:
·
Viruta
de madera
·
Aserrín
·
Centeno.
·
cebada
El
material seleccionado como sustrato debe triturarse en pedazos muy pequeños
(menores a un centímetro) como viruta o
aserrín, secarse muy bien al sol antes de empacarse (para asegurarse de que
tenga baja población de contaminantes), almacenarse en un lugar seco y cubierto
y empacarse en costales limpios y secos. Si por algún motivo se encuentra
humedad en los costales, este material debe desecharse.
Escogido
el material principal del sustrato, se pesa y se mezcla en seco con los otros
componentes que lo enriquecen.
A esta
mezcla de sustratos se le debe dar una humedad del 60% al 65% para facilitar
así el crecimiento del hongo; esto se hace al momento de someterlo al proceso
de esterilización y posterior escurrido. Estos cuatro componentes deben
mezclarse muy bien sobre una superficie limpia y seca para someterlos luego a
un proceso de esterilización.
2) Esterilización del sustrato
Con la
esterilización se pretende eliminar o destruir del sustrato los contaminantes
como hongos, bacterias, semillas y otros microorganismos de manera que la
mezcla quede lista para sembrar la semilla de las gírgolas, las cuales crecerán
libremente sin competencia. Sino esta esterilizado el sustrato, crecen muchos
contaminantes que dañaran el cultivo de las setas.
Poner
a hervir el sustrato: deposito el
sustrato en un recipiente (tambor de 200 l) y agregar agua hasta cubrirlo.
Figura 3: esterilización del sustrato
Tapar el recipiente y dejarlo hervir por 3 horas, escurra sin destapar completamente. Al enfriar, el material estará listo para sembrar.
Figura 4: enfriamiento del sustrato
3) Siembra del micelio del hongo (inoculación): la inoculación consiste en sembrar la semilla en el sustrato esterilizado para permitir el crecimiento y desarrollo del micelio; se realiza en el área de inoculación. Esta debe estar desinfectada completamente para iniciar el proceso. La persona que siembre debe tener toda la protección necesaria para llevar a cabo este proceso.
Se
depositan 2 Kg de sustrato sin exceso de agua en bolsas plásticas y se le
adicionan 40 g de semilla, teniendo en cuenta que el material quede bien
compactado. La semilla debe quedar bien distribuida en todos los lados de la
bolsa. Las bolsas hay que rotularlas con fecha de inoculación y el nombre del
alumno y llevar las bolsas al área de incubación.
Figura 6: siembra de micelio en sustrato viruta y aserrín en bolsas de polietileno
Figura 7: bolsas de sustrato inoculadas con micelio de Pleurotus ostreatus.
4) Incubación
Luego
de haber sembrado el micelio en el sustrato se colocan las bolsas pequeñas en
una bolsa de nylon negra para protegerlos de la luz, deben encontrarse a una T°
de 25 °C para el desarrollo del micelio como se observa en la figura 8. Esta
etapa termina cuando las bolsas pequeñas se encuentran invadidas por las hifas
del hongo del genero Pleurotus ostreatus
Figura 8: bolsas sembradas con micelio del
hongo en etapa de incubación
5) Fructificación
Una
vez el sustrato es invadido por el micelio del hongo hay que cambiar las
condiciones del cultivo, proporcionando un ambiente propicio y adecuado para
lograr una excelente producción.
Se
aumenta la humedad relativa, para lo cual se cierran las ventanas a fin de
evitar la deshidratación y mantener la humedad por encima del 90%; igualmente,
se proporcionan condiciones de semipenumbra para inducir la formación de los
cuerpos fructíferos (setas).
Esta
etapa se puede realizar en el mismo cuarto de incubación, si todas las bolsas
están cubiertas por el micelio; de lo contrario, debe destinarse un cuarto para
esta etapa. Este debe tener ventilación natural, sin grandes corrientes de aire
(el exceso de ventilación deshidratada los sustratos) y estar muy bien
desinfectados. Se le retira la bolsa al sustrato y en unos pocos días (tres a
cinco) ya aparecen las primeras setas que crecen rápidamente, por lo cual se debe
estar listo para la cosecha como se observa en la figura 9. Es importante
anotar que en esta etapa las bolsas deben quedar retiradas una de la otra para
permitir el crecimiento de las setas y su recolección como se observa en la
figura 10.
Figura 10: bolsas sembradas con hongos del genero Pleurotus ostreatus en la etapa de fructificación
Durante
el periodo de fructificaciones se pretende mantener temperaturas máximas de 20
a 22 grados centígrados, humedad del 90% al 100% y semipenumbra.
Si se
necesita aumentar la humedad, se riegan el piso y las paredes con agua
diariamente, o se colocan vasijas con agua; si se observa que el sustrato
tiende a deshidratarse, se le aplica riego, pero teniendo cuidado de hervir y
dejar enfriar toda el agua utilizada, si se sospecha que esta puede ser un foco
de contaminación por su calidad.
Dependiendo
de la calidad de las aguas, estas pueden recibir los tratamientos especiales
antes de ser aplicada sobre el cultivo en fructificación.
Aunque
en esta etapa el riego de contaminación es menor, es importante estar muy
aseados y con las manos desinfectadas con alcohol para realizar las labores de
colocar las bolsas en esta área, retirarles las bolsas y cosechar.
5) Cosecha.
En el
área de fructificación se cosechan las setas maduras aproximadamente un 1 mes
después haber sido inoculado las bolsas como se observa en la figura 11 y 12.
Figura 11: cosecha de hongos comestibles
Figura 12: cosecha de hongos comestibles
En una
misma bolsa, se puede encontrar algunos primordios, setas sin abrir las
sombrillas, setas abriendo las sombrillas, setas ya abiertas y setas muy
abiertas (con los bordes de la sombrilla doblados hacia arriba) como se observa
en la figura 13. Es importante cosechar a tiempo setas que estén abiertas,
tomándolas con la mano por la base de manera cuidadosa, con un movimiento de
torsión como se observa en la figura 14. Las bolsas soportan de cuatro (4) a
(5) cosechas. La producción de la bolsa ira decreciendo paulatinamente hasta
que por degradación del micelio este no produzca más fructificación.
Figura 13: primordios y setas
Después de la primera cosecha, la producción de las bolsas entran en un periodo de reposo de (cinco 5 a 10 diez días) antes de la segunda cosecha, y así sucesivamente.
Durante
este tiempo, se debe cuidar que no se deshidrate el micelio; una práctica útil
es cubrir el sustrato con la bolsa plástica hasta que aparezcan nuevamente los
primordios.
No
todas las gírgolas tienen el mismo tamaño como se pueden observar en la figura
15, así que pueden clasificarse en tres (3) grados diferentes:
*Grande: diámetro del sombrero mayor a 8 cm.
*Mediano: entre 4 y 8 cm de diámetro.
Pequeño: diámetro menor que 4 cm.
*Grande: diámetro del sombrero mayor a 8 cm.
*Mediano: entre 4 y 8 cm de diámetro.
Pequeño: diámetro menor que 4 cm.
Figura 14: tamaños de las setas
Consigna
de cierre.
Luego de haber tomado
apuntes del proceso productivo realizar un diagrama de flujos del proceso
productivo.
Una vez entregada la
actividad de cierre se hará hincapié que en la próxima clase se realizara la práctica
de siembra de hongos comestibles en el laboratorio, por lo que es muy importante tener claro cada una de las etapas
para realizar las actividades propuestas correctamente.
.
ASIGNATURA:
MICROBIOLOGIA INDUSTRIAL AGROALIMENTARIA
TRABAJO
PRÁCTICO DE LABORATORIO.
Objetivos de la clase.
- ·Observar en el microscopio optico con los tres aumentos el micelio del hongo comestible Pleurotus ostreatus
- · Realizar la siembra de hongos comestibles del género antes mencionado
- Usar recursos tecnológicos para tomar fotos de la experiencia.
- · Usar las nuevas tecnologías en la producción de informes
- · Autoevaluarse en el uso y manejo del microscopio y en el uso de recursos tecnologicos.
ACTIVIDAD N°
1: observación en el microscopio del Hongo Pleurotus ostreatus
Materiales: micelio de Pleurotus Ostreatus, cinta adhesiva,
portaobjeto y microscopio.
Técnica
Tomar con
los dedos pulgar e índice cinta adhesiva transparente y tocar el micelio del
hongo. Adherir la cinta sobre un portaobjeto y llevar a la platina del
microscopio. Observar con el aumento de 4X, 10X y 40 X.
Observaciones
Observa y
contesta a estas preguntas:
¿Qué color
tienen esos hilos? ¿Son opacos, transparentes o traslucidos?
Supongamos
que tu respuesta sea transparente.
¿Su
contenido es homogéneo o se ven pequeños corpúsculos?¿Ese contenido es continuo
o separado por tabiques perpendiculares al eje mayor del hiloObserva alguno de
los lugares o puntos donde se reúnen dos o tres hilos o filamentos. o
¿Qué se
desprende hacia arriba y hacia abajo en esos lugares? ¿Compara los filamentos?
Características
de las esporas
La masa
algodonosa o moho que cubre las semillas húmedas está formado por un conjunto
de filamentos o hilos llamados hifas, las que se entrecruzan formando una trama
conocida con el nombre de micelio que es el cuerpo del hongo. Las hifas son
transportes, con tabiques.
Pleurotus
Ostreatus presenta esporas sexuales llamadas basidioesporas que se forman sobre
una base o pedestal llamado basidio. Suelen haber cuatro basidioesporas por basidio
y la producen solamente los hongos de la división Basidiomycota.
ACTIVIDAD N°
2: Siembra de hongos comestibles del
genero Pleurotus ostreatus
Introducción
Aunque
existen diversos métodos para la pasteurización y siembra del hongo en el
sustrato, aquí solo se realizara la técnica manual o artesanal, en bolsas de
plástico.
Objetivo
Realizar
siembra de hongo pleurotus ostreatus, sobre 2 sustratos
Sustrato 1
Viruta y
aserrín.
Sustrato 2
Centeno y
aserrín.
Materiales y
equipos a utilizar
Aserrín, viruta, cebada
Yeso, cal.
Semilla.
Bolsas de polietileno transparentes.
Guantes, barbijos, mascara, guardapolvo.
Malla metálica.
Balanza.
Mecheros.
Tacho de 200 l, ollas.
Baldes.
Termómetro.
Peachímetro
Procedimiento
Desbaratar, picar la cebada, embolsar.
Pesar.
Humedecer.
Pasteurizar.
Escurrir, enfriar y pesar.
Siembra.
Llevar a incubación. Control de temperatura 22ºC.
PESADO
Se debe
pesar el sustrato seco y después de pasteurizar para saber el porcentaje de
humedad que contiene el sustrato.
PASTEURIZADO
Se
preparara el sustrato en seco y se introducirá en bolsas tejidas de
polipropileno identificadas.
Luego
todas las bolsas se colocaran en un tacho de 200 l, se procederá a llenar el
mismo con agua y luego se encenderá el mechero. Cuando la temperatura del agua
alcance los 80º se contara una hora y se apagara el mechero.
SIEMBRA
Para la
siembra del hongo se requiere un área cerrada, limpia, provista de una mesa o
superficie con cubierta de fácil lavado, desinfectada con una solución de
alcohol comercial de 96° diluido en agua (70 por ciento de alcohol, 30 por
ciento de agua).
Luego
de pasteurizado el sustrato se deja enfriar, se pesa y se le adiciona el
porcentaje de cal 1% y yeso 2% necesario para la cantidad de sustrato húmedo.
El
sustrato se inocula con lo que comúnmente se denomina "semilla" o
micelio; el cual consiste en granos de trigo estériles, cuya superficie se
encuentra cubierta por hifas del hongo en cuestión.
En la
mesa se deposita la paja previamente pasteurizada y escurrida. La siembra se
inicia cuando el substrato se enfría a la temperatura menor a 30°C.
En
bolsas de plástico transparentes y nuevas se procede a intercalar manualmente
capas alternas de substrato y semilla, tratando de que la mezcla sea uniforme y
evitando dejar áreas sin cubrir de semilla.
En esta
operación, se mezcla el sustrato y la semilla lo más homogéneamente
posible. Es conveniente emplear "semilla" en una
proporción de 2-3 % peso en peso (mezclar 2 kg de semilla cada 100 kg de
sustrato húmedo).
En esta
etapa se debe prevenir la aparición de contaminaciones trabajando con ropa
limpia, cofia, barbijo y evitar corrientes de aire que transporten polvo.
Al cabo
de unos días, el micelio comenzara a crecer en el sustrato. EXITOS!!!!!
Realizar
un informe teniendo en cuenta los pasos de informes anteriores: introducción, desarrollo,
conclusión y bibliografía.
Linea del tiempo de desarrollo del proyecto aulico
Microbiologia Industrial Agroalimentaria.
Presentación de los resultados del proyecto aulico.
En la tabla 1 se presentan los resultados que se han
obtenido en la etapa de incubación y fructificación de la siembra de Pleurotus ostreatus..
1 ETAPA
|
2 ETAPA
|
||||||
Bolsa
|
Peso de la viruta
|
Peso del aserrín
|
Peso del centeno
|
Peso total
|
Cantidad de bolsas
|
Observaciones realizada el día 8/08/2017
|
Eficiencia biológica
|
1
|
2,100
Kg
|
1,900
Kg
|
4,000
Kg
|
13
|
Todas
la bolsas se encuentran invadidas con el micelio
|
7.5
|
|
2
|
2,500
Kg
|
2,500
Kg
|
5,000
Kg
|
11
|
8
bolsas bien invadidas con el micelio.
2
bolsas invadidas en menor cantidad.
1
bolsa no invadida.
|
2.57
|
|
3
|
2,000
Kg
|
1,500
Kg
|
3,500
Kg
|
10
|
Todas
la bolsas se encuentran invadidas con el micelio
|
Sin
producción hasta el momento
|
|
4
|
2,500
Kg
|
2,500
Kg
|
9
|
3
Bolsas con sustrato compacto bien invadidas.
6
bolsas con poco crecimiento del micelio.
|
18.7
|
||
5
|
3,000
Kg
|
3,000
Kg
|
5
|
Todas
la bolsas se encuentran invadidas con el micelio
|
7.26
|
||
6
|
2,500
Kg
|
2,500
Kg
|
11
|
Todas
las bolsas se encuentran invadidas con el micelio. 1 de las bolsas se
encuentra doble y se observa mejor crecimiento.
|
15.48
|
||
Fuente: elaboración propia
Precocidad de
colonización
Es el tiempo transcurrido entre el día de la inoculación
y el día en que aparecen los primeros primordios como se observa en la figura
18.
Precocidad de colonización en sustrato de centeno: 41
días
Precocidad de colonización en sustrato de viruta-aserrín:
66 días
Cálculos de
eficiencia biológica
EB=
peso de las setas frescas x 100
Peso del sustrato seco
Bolsa
1
298, 2 g x 100 = 7.5 %
4000 g
Bolsa
2
128.6 g x 100 = 2.57 %
5000 g
Bolsa
3
Sin producción hasta el
momento
Bolsa
4
467.5 g x 100 = 18.7 %
2500 g
Bolsa
5
218 g x 100 = 7.26 %
3000 g
Bolsa
6
437.1 g x 100 = 17.48 %
2500 g











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